Optimization of flotation assay conditions for syndapin binding to phosphatidic acid containing liposomes
DOI:
https://doi.org/10.1515/fobio-2017-0002Słowa kluczowe:
protein-lipid interactions, LUVs, density gradient, ultracentrifugationAbstrakt
Flotacja jest jedną z najefektywniejszych metod wstępnej identyfikacji oddziaływań białko-błony lipidowe. W większości przypadków wykorzystuje się w niej małe jednowarstwowe pęcherzyki lipidowe, które służą jako modele błonowe i nie wymagają dodatkowych nośników, takich jak membrany czy nanocząstki polimerowe, które są często używane w innych metodach mających na celu identyfikację oddziaływań białkolipid. W poniższej pracy prezentujemy wyniki uzyskane podczas badań oddziaływań kwasu fosfatydowego i syndapiny. Omawiamy także niektóre techniczne aspekty metody, kładąc nacisk na to jak małe zmiany w warunkach metody mogą wpłynąć na otrzymywane wyniki.
Pobrania
Bibliografia
Bigay, J., Antonny, B. 2006. Real-time assays for the assembly-disassembly cycle of COP coats on liposomes of defined size. Methods in Enzymology, 404: 5–107.
Brian J. P., Kent, H. M., Mills, I. G., Vallis, Y., Butler, P. J. G., Evans, P. R., McMahon, H. T. 2004. BAR domains as sensors of membrane curvature: the amphiphysin BAR structure. Science, 303: 495–499.
Castellana, E. T., Cremer, P. S. 2006. Solid supported lipid bilayers: From biophysical studies to sensor design. Surface Science Reports, 61(10): 429–444.
Czogalla, A., Grzybek, M. Jones, W., Coskun,Ü. 2014. Validity and applicability of membrane model systems for studying interactions of peripheral membrane proteins with lipids. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular and Cell Biology of Lipids, 1841(8): 1049–1059.
Guo, L., Mishra, G., Taylor, K., Wang, X. 2011. Phosphatidic acid binds and stimulates arabidopsis sphingosine kinases. Journal of Biological Chemistry, 286: 13336–13345.
Kooijman, E. E., Carter, K. M., van Laar, E. G., Chupin, V., Koert N. J., Burger, K. N. J., Kruijff, B. 2005. What makes the bioactive lipids phosphatidic acid and lysophosphatidic acid so Special? Biochemistry, 44: 17007–17015.
Kunding, A. H., Mortensen, M. W., Christensen, S. M., Stamou, D. 2008. A fluorescence-based technique to construct size distributions from single-object measurements: Application to the extrusion of lipid vesicles. Biophysical Journal, 95(3): 1176–1188.
Maget-Dana, R. 1999. The monolayer technique: A potent tool for studying the interfacial properties of antimicrobial and membrane-lytic peptides and their interactions with lipid membranes. Biochimica et Biophysica Acta, 1462: 109–140.
Qualmann, B., Roos, J., Digregorio, P. J., Kelly, R. B. 1999. Syndapin I, a synaptic dynaminbinding protein that associates with the neural Wiskott-Aldrich syndrome protein. Molecular Biology of the Cell, 10: 501–513.
Quan, A., Robinson, P. J. 2013. Syndapin – A membrane remodelling and endocytic F-BAR protein. FEBS Journal, 280: 5198–5212.
Ritter, B., Modregger, J., Paulsson, M., Plomann, M. 1999. PACSIN 2, a novel member of the PACSIN family of cytoplasmic adapter proteins. FEBS Letters 454(3): 356–362.
Srinivas, S. P. G., Caia, B., Vitaleb, N., Naslavskya, N., Caplana, S. 2013. Cooperation of MICALL1, syndapin2, and phosphatidic acid in tubular recycling endosome biogenesis. Molecular Biology of the Cell, 24: 1776–1790.
Sumoy, L., Pluvinet, R., Andreu, N., Estivill, X., Escarceller, M. 2001. PACSIN 3 is a novel SH3 domain cytoplasmic adapter protein of the pacsin-syndapin-FAP52 gene family. Gene, 262: 199–205.
Pobrania
Opublikowane
Numer
Dział
Licencja

Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Użycie niekomercyjne – Bez utworów zależnych 4.0 Międzynarodowe.
